- 507.85 KB
- 2022-04-21 发布
- 1、本文档由用户上传,淘文库整理发布,可阅读全部内容。
- 2、本文档内容版权归属内容提供方,所产生的收益全部归内容提供方所有。如果您对本文有版权争议,请立即联系网站客服。
- 3、本文档由用户上传,本站不保证质量和数量令人满意,可能有诸多瑕疵,付费之前,请仔细阅读内容确认后进行付费下载。
- 网站客服QQ:403074932
●CT●-BRICULTURgE华北农学报·2010,25(增刊):1-6_●旺札l_S帅“植物酰基载体蛋白基因家族序列分析李孟军r,史占良,郭进考,何明琦,王彦霞2(1.石家庄市农林科学研究院,河北石家庄050041;2.河北省小麦工程技术研究中心,河北石家庄050041)摘要:以拟南芥酰基载体蛋白为查询序列,检索18个植物物种的基因组数据库,获得138个酰基载体蛋白基因和12个基因片段。植物酰基载体蛋白由1个基因家族编码,成员2—16个。植物酰基载体蛋白磷酸泛酰巯基乙胺结合位点(Set)周围的氨基酸序列高度保守,该位点包含在保守的DSL基序中。植物酰基载体蛋白基因结构类型分为5种,其中类型IⅡ酰基载体蛋白基因所占比例最大。绝大多数植物酰基载体蛋白基因家族成员单独或2—4个成员分布在一条染色体上。在138个植物酰基载体蛋白基因中,19个具有不同剪接体。植物酰基载体蛋白基因家族成员可能起源于一个共同的祖先基因。关键词:酰基载体蛋白;基因家族;亚细胞定位;基因结构中图分类号:Q78文献标识码:A文章编号:1000—7091(2010)增刊一0001—06SequenceAnalysisofPlantAcylCarrierProteinLIMeng-jun’,SHIZhan.1iang,,GUOJin.kao,,HEMing.qi',WANGYan—xia,(1.ShijiazhuangAcademyofAgriculturalandForestrySciences,Shijiazhuang050041,China;2.WheatEngneeringResearchCenterofHebeiProvince,Shijiazhuang050041,China)Abstract:Blastingtargetgenomedatabaseof18plantspeciesusingeightA.thalianaacylcarrierproteins(ACPs)asqueries,138ACPcDNAsequencesand12ACPfragmentswereisolated.PlantACPswereencodedbyonegenefamilyincluding2—16members.Theaminoacidsequencesurroundingthephosphopantetheineattach-mentsites(Ser)withintheDSLmotifwashighlyconservedinplantACPs.GeneorganizationofplantACPscanbegroupedintofivetypesandthetypeII1wasinthelargestproportion.Oneor2—4membersofACPfamilieswerelo—catedononechromosomeinmostplantgenomes.NineteenACPgenescanproducesplicingvariantsin138plantACPs.PlantACPisoformsmaybeoriginatedfromoneancestralACPgene.Keywords:Acylcartierprotein;Genefamily;Subcelluarlocation;Geneorganization酰基载体蛋白(Acylcarrierprotein,ACP)是一his)]、大麦.9]、白菜型油菜(Brassicacampestis类具有保守丝氨酸残基的小分子量的酸性蛋白质。)∞】、甘蓝型油菜(B.napus)n引、披针叶萼距花在脂肪酸从头合成过程中,ACP携带酰基链完成缩(Cuphealanceolata)¨卜、拟南芥(Arabidopsisthali.合、还原和脱氢等酶促反应。同时,ACP还是硬脂ana)n和栽培花生(Arachishypogaea)加。。植物酰一ACP脱饱和酶(Stearoyl—ACPdesaturase)、脂ACP的表达方式包括组成型表达、组织特异性表达酰基一ACP脱氢酶(Acyl—ACPhydrolase)和脂酰基和细胞器特异表达3种类型·。JJJ船-24]。转移酶(Acyltransferase)的辅助因子¨J,在不同长植物脂肪酸中不同种类脂肪酸的含量、组成以度酰基链的去饱和、脱氢和转移反应中发挥作用。及在总脂肪酸中所占比例,与ACP的种类及差异表在细菌和植物中,ACP属于1个由保守载体蛋达具有密切关系。同时,一些种类的ACP还具有特白组成的大家族。在细菌中,ACP由1个基因编殊的作用。在拟南芥叶中过量表达ACP1(在种子码H,而在植物中存在多个ACP基因,如菠菜(sp中表达占优势)改变了叶片的脂肪酸组成,18:3含noA2eaoleracea)、大豆J、蓖麻(Ricinuscommu—量上升,而16:33含量下降副;通过反义RNA沉默收稿日期:2010—05—20基金项目:国家重点基础研究发展计划项目(NO.2009CB118300)作者简介:李孟军(1972一),男,河北玉田人,博士,主要从事作物分子生物学研究。通讯作者:郭进考(1951一),男,河北新乐人,研究员,主要从事小麦遗传育种研究。nIB1t●一A9RICULTURgE2华北农学报25卷B口REnLI—SInIC●——技术显著降低ACP4的表达量导致叶脂含量降低和bnet.org/software/ClustalW.htm1)。利用MEGA4.16:33在总脂肪酸组成中所占比例的降低【2。芫1软件(http://www.megasoftware.net/mega41.ht.荽(Coriandrumsativurn)Cs—ACP一1参与了种子油中m1),采用邻接法构建系统进化树,1000次重复计特殊的单烯脂肪酸的合成引。棉花(Gossypiumhir-算自展分析值。序列着色在BoxShade服务器(ht.sutum)纤维特异ACP通过参与膜脂的合成在棉纤tp://www.ch.embnet.or#software/BOX—form.Ht—维快速延伸过程中发挥重要作用。辣椒Acl基m1)上进行。因在辣椒素合成必需的分支脂肪酸链的合成中具有1.3植物ACP的亚细胞定位预测与基因结构分析特殊作用。植物ACP的亚细胞定位预测在TargetP1.1服在高等植物中,ACP在拟南芥中的研究最为深务器(http://www.cbs.dtu.dE/services/TargetP/)入。拟南芥ACP基因家族的8个成员均由核基因和WoLFPSORT(http://wolfpsort.org/)上进行。根编码,其中5个定位于质体,3个定位于线粒体。拟据2种软件的在线预测结果推测植物ACP的亚细南芥ACP具有不同的调控方式和表达模式【16,17]。胞定位。植物ACP的染色体分布、基因组DNA序随着植物基因组测序计划的广泛开展,截止到2009列以及eDNA序列信息从基因组数据库中获取。在年底,在http://www.phytozome.net已公布18个植GeneStructureDisplayServer(http://gsds.cbi.pku.物物种的全基因组数据,这不仅极大促进了18个植edu.en/index.php)对植物ACP基因组序列与其相物物种的分子生物学研究,而且为从全基因组水平应的eDNA序列进行比较,获得每个ACP的基因结开展单基因的比较研究提供了数据平台。本研究从构信息。成员数目、基因结构、亚细胞定位、染色体分布等方2结果与分析面对已公布基因组数据的18个物种的ACP基因家族进行了较为全面的分析,为进一步阐明ACP在植2.1植物ACP基因家族物脂肪酸生物合成中的作用奠定了基础。以拟南芥ACP氨基酸序列为查询序列对已公布基因组数据的18种植物的基因组数据库进行1材料和方法tBlasm分析,共获得138个ACP和12个该基因片1.1植物ACP基因的获取段。在具有完整开放读码框的138个植物ACP中,以拟南芥ACP(AT1G54580、AT1G54630、66个ACP可能定位于质体(质体型ACP),41个AT1G65290、AT2G44620AT3G05020AT4G25050、ACP可能定位于线粒体(线粒体型ACP),其余31AT5G27200和AT5G47630)的氨基酸序列为查询序个ACP由于2种预测方法结果不一致而无法推测列对基因组数据库(http//WWW.phytozome.net)中其可能的亚细胞定位。大豆是异源四倍体植物,莱茵衣藻(Chlamydomonasreinhardtii)、小立碗藓ACP基因家族最为复杂,由16个成员组成,并且其(Physcomitrellapatens)、百叶卷柏(Selaginellamoel—中4个成员(Glyma03g4O25O、Glyma05g38490、Gly—lendorffii)、琴叶拟南芥(A.1yrata)、番木瓜(Caricama09go1630、Glyma15g10520)具有不同转录本。莱papaya)、黄瓜(Cucumissativas)、大豆(Glycine茵衣藻为单细胞绿藻,ACP基因家族最小,仅2个成max,)、木薯(Manihotesculenta)、蒺藜苜蓿(Medicago员。禾本科4个不同属物种的ACP基因家族分别truncatula)、斑点猴面花(Mimulusguttatus)、毛果杨具有8~9个成员,ACP氨基酸序列一致性为(Populustriehocarpa)、蓖麻(R.communiz)、葡萄(—13.2%~96.2%;十字花科拟南芥属的拟南芥和琴tisvinifera)、二穗短柄草(Brachypodiumdiztachyon)、叶拟南芥2个物种的ACP基因家族成员数目分别水稻(Oryzasativa)、高粱(So耐umbicolor)和玉米为8个和9个,ACP氨基酸序列一致性为15.3%一(Zeama)l7个植物物种全基因组数据进行了97.5%。研究表明,已公布基因组数据的18个植物tBlastn检索,使用LasergeneSeqManIIModule物种的ACP均由1个多基因家族编码,成员数目(DNAStar)(http:/www.DNAStar.corn)对检索到的2—16个。同科不同属的植物以及同属的不同植物匹配结果进行分析和整理。ACP基因家族成员均有明显分化。1。2蛋白序列比对与系统进化分析2.2植物ACP的亚细胞定位与系统进化分析从基因组数据库中获取18个植物物种ACP的根据植物ACP的氨基酸序列,利用TargetP1.1eDNA序列以及推导的蛋白氨基酸序列。ACP多序Server和WoLFPSORT对植物ACP的亚细胞定位进列比对使用ClustalW1.83软件(http://www.ch.am—行了预测。在2种程序的预测结果中,31个植物n且GT●增刊李孟军等:植物酰基栽体蛋白基因家族序列分析3●ORICULTURAEDOREALI—SIHICaACP的亚细胞定位不一致,占总数的22.5%;108个型ACP和线粒体型ACP之间的过渡类型。聚类分植物ACP氨基端具有明显的质体或线粒体转运肽析和亚细胞定位结果表明,植物细胞除质体中的II特征。ACP氨基酸序列比对表明,植物ACP磷酸泛型脂肪酸合成酶复合体外,在线粒体中亦普遍具有酰巯基乙胺结合位点(Phosphopantetheineattachment脂肪酸合成酶复合体¨圳。~~一~一一一一一一一~一~一一~一一Ⅲ~蛐∞∞~site)周围的氨基酸序列高度保守,该位点包含在保2.3植物ACP基因结构与染色体分布守的Asp—Ser—Leu(DSL)基序中,该基序为磷酸泛酰基因组序列(genomicDNAsequence)和cDNA巯基乙胺基转移酶家族成员识别引。在植物ACP序列的比较表明,植物ACP基因结构分为5种类型的4个保守的Or.螺旋中,仅螺旋II最为保守,螺旋(图3):(r)编码区由6个外显子和5个内含子组II在与II型脂肪酸合成酶复合体组分的相互作用成,类型I仅见于莱茵衣藻(Au9.Cre13.g577100)和中具有重要作用,被称为识别螺旋。莱茵衣藻、毛果杨(POPTR_0018sO8310);(II)编码区由5个外小立碗藓、百叶卷柏、拟南芥、水稻5个物种的29显子和4个内含子组成,类型II仅见于大豆(Gly—个ACP被分为2组,2组之间0【螺旋II保守,而0【ma07g04800,Glymal0g30000,Glymal6gO1380)和毛螺旋I、III和IV则存在明显差别(图1)。根据拟南果杨(POPTR一0012s10710);(III)编码区由4个外芥和水稻ACP的分组结果推测,2组ACP可能分别显子和3个内含子组成,绝大多数质体型ACP属于代表质体型和线粒体型ACP的结构特征。对18个这种类型;(IV)编码区由3个外显子和2个内含子物种的138个ACP进行了系统进化树的构建(图组成,这种类型在葡萄ACP基因家族中成员最多2),分析表明,植物ACP系统进化树具有2个大的(GSVIVT00008887001、GSVIV,ID0034029001、GS—分支,TargetP1.1Server和WoLFPSORT2种程序VIVT00025038001);(V)编码区由2个外显子和1预测结果不一致的31个植物ACP也分别归人2大个内含子组成,绝大多数线粒体型ACP属于这种类分支。此外,分支I包括34个线粒体型ACP;分支型。分析表明,植物ACP基因结构类型丰富,各种II包括66个质体型ACP和7个线粒体型ACP。在结构类型所占比例依次为类型III>类型V>类型II分支II中7个线粒体型ACP和9个未定位ACP的>类型IV>类型I。结构与质体型ACP更为接近,在进化上可能是质体M植物ACP与大肠杆菌4个a‘螺旋序列对应的序列用上划线标出。相同和保守的氨基酸用黑色和灰色字体标出。保守的DSL基序用星号标出oCre.C.reinhardtii;Pp.patens;Sm.S.m0e7颤;AT.A.thⅡliana;08.0.sativa。lhe4a-helicescorrespondingtothesequencesofE.coliareindicated.Identicalandconservedresiduesareshadedblackandgreyrespectively.Thecon—。servedDSLmotifismarkedwithasterisks.Cre.C.reinhardtii;Pv.P.patens;Sm.S.,n。砒,;AT.A.thaliana;08.O.snfm.图l植物ACP的多序列比对Fig.1MultiplesequencealignmentofpantACPisoforms数植物的非翻译区(Untranslatedregion,uTR)具有剪接现象,主要包括:①5,UTR含有2个n●CT●一1日RIGULTURAE4华北农学报25卷BOREALI-SIHI∞——内含子,此类型仅见于毛果杨(POPTR_0016s00800.AG规则;④5UTR和3UTR各含有1个内含子,类1);②5UTR含有1个内含子,类型2在小立碗藓型4ACP仅见于水稻ACP基因家族成员的可变剪ACP家族中成员最多(104574、105807、233188);③接体中(LOC—Os03g39860.2),此类型ACP不具有3UTR含有2个内含子,类型3仅见于琴叶拟南芥植物ACP典型特征,推测不具有ACP功能。(477783),并且其第2个内含子的剪接不符合GT/旦瞄}.代表在分支II中线粒体型ACP;A1.A./~am;AT.A.thaliana;Bradi.B.distachyon;Cp.C.papaya;Cre.C.reinhardtii;Cucaa·csatitnts;Glyma·G·m“;Me.Mescu/enta;Medtr.M.truncatula;mg.M.guttatus;Os.O.sativa;Pp.patens;POPTR.trichocarpa;Rc.R.communis;Sm-S·如,f;Sb.S.blcolor;GSVIVT.vinlfera;GRMZM.z.rrmys。}.MitochondrialACPinphylogeneticclasscII;AI.A.1Fata;AT.A.thaliana.Bradi,B.distachyon;Cp.C.papaya;Cre.C.reinhardtii;Cuesa·C·sat&us;GIyma.G.,M;Me.M.esculenta;Medtr.tnmcamla;mg.Mguttatus;Os.O.sativa;Pp.P.patens;POPTR.trichocarpa;Rc.R·conunun/s;Sin.S·moe/-|(f0;Sb.S.bwo~r;GSVlVT.dnifera;GRMZM.Z.mays.图2植物ACP的系统进化树Fig.2PhylogenetictreeofplantACPisoformsACP基因家族在植物基因组中的分布有2种方衣藻和葡萄;基因家族成员单独或2—4个成员2种式:家族成员均单独存在于1条染色体上,如莱茵方式分别分布在一条染色体上,绝大多数植物ACPn●CT●增刊李孟军等:植物酰基栽体蛋白基因家族序列分析53o8艇RI札CUI-LTsUmRI“A|基因家族在植物基因组中的分布属于这种方式。在同,编码区剪接位点发生改变,翻译提前终止,如AT1G54630Glyma03g4o25oMedtr4g152090LOC植物基因组中,分布在一条染色体上的ACP基因家—Os08g4358oLOCOs03g39860LOC—Os03g63930族成员具有相同的亚细胞定位,如二穗短柄草第4—染色体上的3个成员Bradi4gl8170、Bradi4go5860、GRMZM2G181542,或者仅导致外显子不同,如Bra—di4g05860、POPTR0013sO3180、cassava19125.valid.Bradi4g36560,或者具有不同的亚细胞定位,如高粱_第1染色体上的2个成员Sb01go00610和m1;②翻译起始点相同,在5UTR发生剪接或剪接Sb01go35260。多个ACP基因家族成员同向或反向方式不同,如AT5G47630、POPTR0016s00800;⑨翻分布在一条染色体上,前者如大豆l5号染色体上的译起始点不同,剪接位点改变或不改变,如Gly—Glyma15g10520和Glyma15g12560,后者如蒺藜苜蓿ma05g38490、Glyma09gO1630、GRMZM2G091715;④7号染色体上的Medtr7g092290和Medtr7go9oooo。翻译起始点相同,仅转录起始点不同,如Gly-ACP基因家族在植物染色体上的分布表明,植物ma15g10520;⑤翻译起始点不同,编码框位置发生ACP基因家族成员可能起源于一个共同的祖先改变,如Medtr4g152100。玉米GRMZM2G019866和基因。水稻LOC—Osl1g31900的不同剪接体包括类型1和2.4植物ACP的可变剪接类型5两种类型。植物ACP基因家族成员通过可在138个植物ACP中,19个具有不同的剪接变剪接产生不同的剪接体,有些剪接体编码蛋白的体,分别属于拟南芥、二穗短柄草、大豆、木薯、蒺藜氨基端序列具有不同的转运肽特征,可能在不同的苜蓿、水稻、毛果杨和玉米8个物种的ACP基因家细胞器中具有不同的功能;部分剪接体不具有ACP族,这些剪接体可分为5种类型:①翻译起始点相典型特征,推测不具有ACP功能。I(Au9.Crel3.9577100)1I(POPTR_0012s10710)Ⅲ(AT!G54580)N(GSVIVT00034029001)V(AT2o2D)AT.A.thaliana;Cre.C.re/nhardt/;POPTR.P.trich~arpa;GSVIVT.v.vinifera:GRMZM.z.mays图3植物ACP的基因结构Fig.3GeneorganiTationofplantACPgenesmal6gO1380、小立碗藓的110052、葡萄的GS.3讨论VIVT00021632001包含泛酰琉基乙胺结合位点的通过对18个物种的全基因组数据分析,发现这DSL基序发生了改变,依次分别为DIL、CIL、DTL和些植物的ACP均由1个基因家族编码,成员数目DL,异亮氨酸(Ile)、苏氨酸(Thr)和甲硫氨酸2一l6个,结合已有研究结果,推测植物从藻类植物(Met)是否具有泛酰巯基乙胺结合位点功能尚未见到单子叶植物ACP均由1个基因家族编码.2。报道。植物细胞至少在质体和线粒体中具有脂肪酸合成酶植物ACP基因家族成员结构保守,具有共同的复合体,其中定位于质体的II型脂肪酸合成酶复合结构特征;基因结构类型多样,但绝大多数属于类型体研究最为深入。WoLFPSORT(http://wolfpsort.III和V;在植物基因组中常见多个成员位于l条染o)亚细胞定位预测结果表明,少数ACP家族成色体上,这些成员结构相同或不同,在染色体上排列员可能定位于胞质,植物细胞的胞质中是否存在脂方向相同或不同;部分成员的不同剪接体剪接方式肪酸合成酶复合体是1个值得探讨的问题。不同,但均具有ACP典型特征。由此,我们推测植植物ACP家族成员结构保守,其基本特征为泛物ACP基因家族成员可能起源于1个共同的祖先酰巯基乙胺结合位点(Ser)周围的氨基酸序列高度基因,基因结构类型I可能代表植物ACP原始保守,包含泛酰巯基乙胺结合位点的保守的DSL基类型。序,具有4个旺螺旋,其中Ot螺旋II最为保守。在异源四倍体大豆的ACP基因家族成员最多,其138个植物ACP基因家族成员中仅木薯的cassa—中4个成员具有2—4个不同剪接体;基因结构类型va19954.ml和毛果杨的POPTR一0018s08310未发丰富,具有4种类型,其中类型II成员所占比例最现典型的ACP特征。大豆的Glyma09gO6850、Gly—高;2个成员Glyma09gO1630、Glyma15g12560的氨n●ET-nBRlCULTURAE6华北农学报25卷BOREnLl·SInICl基端具有典型线粒体转运肽特征,但其结构与质体[J].Planta,1998,205(2):263—268.[15]VoetzM,KleinB,SchellJ,TopferR.ThreediferentcD-型ACP更为接近,可能代表过渡类型。毛果杨ACPNAsencodingacylcarrierproteinsfromCuphealancet,-基因家族具有11个成员,其中2个成员具有不同剪/ata[J].PlantPhysiol,1994,106:785—786.接体;具有4种基因结构类型,毛果杨ACP基因家[16]BonaventureG,OhlroggeJB.DiferentialregulationofmRNAlevelsofawl·cartierproteinisoformsinArabi-.族中各有1个成员为较为原始的类型I和类型II;dopsis[J].PlantPhysiol,2002,128:223—235.POFI'R0013s08220在系统进化树的分支I上处于1[17]Hlousek—RadojcieA,Post—BeittenmillerD,OhlroggeJB.Expressionofconstitutiveandtissuespecificacylcarrier个独立分支上。ACP基因家族特征表明,大豆和毛proteinisoformsinArabidopsis[J].PlantPhysiol,1992,果杨在被子植物中可能代表较为原始的植物类型。98:206—214.[18]LamppaG,JacksC.Analysisoftwolinkedgenescodingfortheacylcarrierprotein(ACP)fromArabidopsis参考文献:thaliana(Columbia)[J].PlantMolBiol,1991,16(3):469—474.[1]McKeonT,StumpfPK.Purificationandcharacterizationofthestearoyl-acylcarrierproteindesaturaseandtheac·[19]ShintaniDK.OhlroggeJB.Thecharacterizationofami—tochondrialacylcarrierproteinisoformisolatedfromAra-yl—acylcarrierproteinthioesterasefrommaturingseedsofbidopsisthaliana[J].PlantPhysiol,1994,lO4(4):1221safflower[J].JBidChem,1982,257:12141—12147.[2]OhlroggeJB,ShineWE,StumpfPK.Fatmetabolismin—1229.higherplants:characterizationofplantawl—ACPandacyl—[20]LiMJ,LiAQ,XiaH,eta1.Cloningandsequenceanal-ysisofputativetypeIIfattyacidsynthasegenesfromCoAhydrolases[J].ArchBiochemBiophys,1987,189:382—391.Arachish)pogaeaL[J].JBiosci,2009,34(2):227—238.[3]FrentzenM,HeinzE,McKeonTA,eta1.Specificitiesand[21]AlunlMR,MazourekM,LandryLG,eta1.Diferentialseleetivitiesofglycerol-3·phosphatdacyltransferaseandexpressionoffattyacidsynthasegenes,Ael,Fatandmonoacy1glcerol一3一P—hosphateacyhransferasefrompeaandspinachchloroplasts[J].EurJBiochem,1983,129:Kas,inCapsicumfruit[J].JExpBot,2003,54:1655—1664.629—636.[22]BatteyJF.OhlroggeJB.Evolutionaryandtissue·specifc[4]MagnusonK,JackowskiS,RockC0,eta1.Regulationofcontrolofexpressionofmultipleacylcarrierproteiniso-fattyacidbiosynthesisinEscherichiacoli[J].Microbialformsinplantsandbacteria[J].Planta,1990,180:352Rev,1993,57:522—542.[5]OhlroggeJB,KuoTM.Plantshaveisoformsofacylcard——360.[23]SuhMC,SchultzDJ,OhlroggeJB.Isoformsofacylcar-erproteinthatareexpresseddiferentlyindiferenttissuesrierproteininvolvedinseedspecificfattyacidsynthesis[J].JBiolChem,1985,260:8032—8037.[J].PlantJ,1999,17:679—688.f6]SchererDE,KnaufVC.IsolationofacDNAcloneforthe[24]WadaH,ShintaniD,OhlroggeJB,Whydomitochondriaacylcarrierprotein—Iofspinach[J].PlantMolBiol,synthesizefattyacids?Evidenceforinvolvementinlipoie1987,9:127—134.acidproduction[J].ProcNatlAcadSciUSA,1997,94:[7]SchmidKM,OhlroggeJB.Arootacylcarrierprotein—II】59】一】596.fromspinachisalsoexpressedinleavesandseeds[J].PlantMolBiol,1990,15(5):765—778.[25]BranenJK,ChiouTJ,EngesethNJ.Overexpressionofawlcarrierprotein—laltersfattyacidcompositionofleaf[8]HansenL.ThreecDNAclonesforbarleyleafawlcarriertissueinArabidopsis[J].PlantPhysiol,2ool,127:222—proteinsIandIII[J].CarlsbergResCommun,1987,52:229.38】一392.[9]HansenL,yonWettstein—KnowlesP.Thebarleygenes[26]BranenJK,ShintaniDK,EngesethNJ.Expressionofantisenseacylcarrierprotein-4reduceslipidcontentinAcllandAcl3encodingawl—carrierproteinsIandIIIArabidopsiseaftissue[J].PlantPhysiol,2003,132:748arelocatedondiferentchromosomes[J].MolGenGen—et.1991,229:467—478.—756.[27]songP,AllenRD.Identificationofacottonfiberspecf-[10]RoseRE.DeJesusCE,MoylanSL,et.Thenucleo—icacylcarrierproteincDNAbydiferentialdisplay[J].tidesequenceofacDNAcloneeneodingacylcarrierpro-BiochimBiophysActa,1997,1351:305—312.rein(ACP)fromBrassicacampestisseeds[J].Nucleic[28]MofidMR,FinkingR,MarahielMA.Recognitionofhy—AeidsRes.1987.15:71—97.bridpeptidylcarrierpmteins/acylcarrierproteinsin[11]DeSilvaJ,LoaderNM,JarmanC,eta1.Theisolationnonribosomalpeptidesynthetasemodulesbythe4:Dho5一andsequenceanalysisoftwoseed.expressedacylcarderphopantetheinyltransferasesAcpSandsfp[J].JBidproteingenesfromBrassicanapus[J].PlantMolBiol,Chem,2002,277:17023—17031.1990,14(4):537—548.[29]ZhangYM,MarrakehiH,WhiteSW,eta1.The印eft—[12]SaffordR.WindustJHC,LucasC,eta1.Plastidlocal—tionofcomputationalmethodstoexplorethediversityisedseedacylcarrierproteinofBrassicanapusisenco—andstructureofbacterialfattyacidsynthase[J].JLipiddedbyadistinct,nuclearmuhigenefamily[J].EurJRes,20o3,44:1—1O.Bioehem,1988,174:287~295.r.1YasunoR.vonWettstein.KnowlesP。WadaH.Identifca—[13]KopkaJ,RobersM,SchuchR,eta1.Acylcarrierpro—LJtionandmoleeularcharacterizationofthebeta—keto-reinsfromdevelopingseedsofCuphea2anceolataAitawl一[acylcarrierprotein]synthasecomponentofthe『J1.Planta,1993,191:102—111.Arabidopsismitoehondrialfattyacidsynthase[J].JBiol[14]SehfittBS,Brumme1M,SchuchR,etaI.Theroleofaa—Chem,2oo4。279:8242—8251.ylcarrierproteinisofoInsfromCuphealanceolataseedsinthede—novobiosynthesisofmedium—chainfattyacids